超声波提取条件对酿酒葡萄皮渣花色苷的影响

为了比较不同超声提取条件对酿酒葡萄皮中花色苷组分的影响,同时也为葡萄皮渣的开发利用提供依据.采用不同超声波功率和超声时间提取酿酒葡萄皮渣中的花色苷组分,并利用高效液相色谱-质谱联用技术(HPLC-MS)对提取物中的花色苷成分进行检测.结果表明,超声波辅助提取葡萄皮渣花色苷,不仅可以显著提高花色苷的提取量,还可增加花色苷的提取类型.此外,采用不同的超声功率或超声时间提取葡萄皮花色苷,对花色苷的提取量和组成均具有影响.60W超声功率处理20min提取的葡萄皮花色苷的含量最高,高达(60.95±5.26)mg/L.
冰蓄冷由于其优良的特性而成为目前研究的焦点,但用传统的方法制备动态冰容易导致冰粒堆积甚至结块而不具有良好的流动性.本文从冰晶的结构入手,选择了几种添加剂进行了实验研究.结果表明,强极性的无机化合物对水分子的影响太大,破坏了冰晶的生长;含有羟基的醇类化合物能在一定程度上阻碍冰晶的生长,但由于分子较小,阻碍作用有限,而亲水又亲油的表面活性剂具有良好的阻碍能力,是理想的二元冰蓄冷系统控制冰晶生长的添加剂.
建立同时测定混合体系中色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸的同步荧光分析方法.以波长差△λ=70nm进行同步荧光扫描,色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸的同步特征峰(以激发波长表示)分别位于280、228、206nm.酪氨酸和苯丙氨酸可直接由同步特征峰的信号强度进行定量;色氨酸的同步特征峰略受酪氨酸的弱峰影响,采用一阶导数处理后,即可消除干扰,实现定量分析;检出限分别为6.9×10-9、3.8×10-8、4.2×10-7mol/L.该方法无需预分离过程,用于啤酒及氨基酸注射液样品的测定,结果满意.
文章旨在探索核因子-κB (NF-κB)和丝裂原活化蛋白激酶(MAPKs)通路是否介导益生性酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)诱导绵羊瘤胃上皮细胞(RECs)β-防御素-1(SBD-1)基因的转录.首先建立绵羊RECs培养体系作为体外试验模型,选用诱导SBD-1转录最高的菌液浓度和诱导培养时间进行信号通路初步研究,采用实时荧光定量逆转录PCR (RT-qPCR)对已建立的诱导SBD-1转录模型中的细胞膜受体——Toll样受体2(TLR2)、信号衔接蛋白——髓样分化因子(MyD88)以及NF-κB和MAPKs通路中的相关因子基因转录变化进行检测;然后选用NF-κB和MAPKs通路中的4种特异性抑制剂(即NF-κB通路特异性抑制剂PDTC、P38通路特异性抑制剂SB202190、ERK 1/2通路特异性抑制剂PD98059、JNK通路特异性抑制剂SP600125)通过单独或相互组合处理细胞后再进行诱导培养,同时采用RT-qPCR的方法检测用抑制剂处理绵羊RECs后SBD-1 mRNA的转录水平.结果表明:酿酒酵母菌刺激RECs后,NF-κB和MAPKs通路中各因子NF-κB、P38、JNK、ERK1/2、细胞膜受体TLR2与信号衔接蛋白MyD88的mRNA水平与未刺激组相比均有所升高,且呈显著性差异(P＜0.01或P＜0.05);通过单独或组合添加抑制剂后再诱导,均发现特异性抑制剂PDTC、SB202190、SP600125、PD98059可极显著抑制酿酒酵母菌对RECs SBD-1的上调作用(P＜0.01),且P38通路特异性抑制剂SB202190的抑制效果最明显.结果提示,酿酒酵母菌诱导绵羊RECs SBD-1的转录可能与TLR2-MyD88-NF-κB/MAPKs通路有关,但以TLR2-MyD88-MAPKs中的TLR2-MyD88 P38通路为主要的信号通路.
通过以鹿茸血酒高(50ml/kg)、中(16.67ml/kg)、低(8.33ml/kg)剂量对昆明小鼠抗疲劳功能进行了实验研究,结果表明鹿茸血洒高剂量组与酒基对照组相比,负重游泳时间明显延长;运动后20min血乳酸消除幅度与血乳酸曲线下面积同酒基对照组相比,均大幅度降低;尿素含量明显下降;以上三个指标经方差分析均具显著性差异(p<0.05),而对体重与肝糖原无明显影响.说明鹿茸血酒具有较好的抗疲劳功能.
白酒废硅藻土再生装置，涉及过滤技术领域，特别是过滤用废硅藻土再生技术领域。密闭的器体上部分别连接进水管、气体呼吸阀门、废硅藻土进口、白酒进口管，进水管上设进水阀门；器体的下底设排污口，排污口上设排污阀；器体的中部侧壁连接排油水口，排油水口上连接排油水管，排油水管上设阀门；在排污口和排油水口之间的器体内设出口在器体外的残液回收管，残液回收管上设置阀门；在排污口和残液回收管之间的器体内设出口在器体外的硅藻土回收管，硅藻土回收管上设阀门；器体的内部设气体搅拌器。通过再生后的硅藻土，可再用于对白酒进行过滤处理，可提高硅藻土的利用价值，降低白酒生产成本。